制作玻片標本對認識生物體的形態(tài)結(jié)構(gòu)具有重要意義。玻片標本有臨時玻片標本（如涂片、壓片、臨時裝片）和永久玻片標本（如永久裝片、切片）。

1．涂片法

涂片法是將材料均勻地涂布在載玻片上的一種制片方法。

涂片材料有單細胞生物、小型藻類、血液、細菌培養(yǎng)液、動植物的疏松組織、精巢、花藥等。

涂片時應(yīng)注意：（1）載玻片必須清潔。（2）載玻片要持平。（3）涂層須均勻。涂抹液滴在載玻片中間偏右，用解剖刀刃或牙簽等涂勻。（4）涂層要薄。用另一載玻片作推片，沿滴有涂抹液的載玻片面（二載玻片夾角應(yīng)為30°～45°）由右向左輕輕推動，涂成均勻一薄層。（5）固定。如需固定可用化學固定劑或干燥法（細菌）固定。（6）染色。細菌用亞甲基藍，血液用瑞氏染液。染色液要蓋住全部涂面。（7）沖洗。用吸水紙吸干或烤干。（8）封片。長期保存用加拿大的樹膠片。

2．壓片法

壓片法是將生物材料置于載玻片和蓋片之間，施加一定壓力，將組織細胞壓散的一種制片方法。

壓片法的一般過程：

（1）取材。觀察細胞分裂，應(yīng)選取細胞分裂旺盛、新鮮的組織細胞為材料。如根尖、莖尖分生組織、骨髓細胞、花藥（花粉母細胞）。精巢（精母細胞）等。

（2）固定。材料固定可根據(jù)需要而定，取材后立即壓片觀察，可不作單獨固定處理（與染色同步進行）；取材后不立即視察，可將材料用固定液（一般用醋酸酒精固定液）固定。固定2～24小時（因材料而異）后用95％乙醇清洗，保存于70％乙醇中，備用。

（3）離析。對細胞不易散開材料用水解分離液（如1N HCl或鹽酸一酒精液）處理，一般處理6～20min，解離后經(jīng)水漂洗后方能染色。

（4）染色。染色劑種類很多。觀察染色體常用醋酸洋紅染色液染色。

（5）壓片。將材料放在載玻片上，加一滴清水或染液，蓋上蓋玻片用拇指輕輕壓片。

（6）觀察。壓片后，即可在顯微鏡下觀察。

3．裝片法

裝片法是將生物材料采取整體封固制成玻片標本的方法，用此法可制成臨時或永久裝片。

裝片材料有：微小生物如衣藻、水綿、變形蟲、水螅，植物的葉表皮；昆蟲的翅、足、口器，人的口腔上皮細胞等。

裝片法制作時應(yīng)注意：

（1）手持載玻片時，應(yīng)注意持平，或放在平臺上。滴水時水量要適當，以恰好被蓋玻片蓋滿為度。（2）應(yīng)將材料用解剖針或鑷子展開不使重疊，展平在同一平面上。

（3）放蓋玻片時，從一側(cè)慢慢蓋在水滴上，防止出現(xiàn)氣泡。

（4）染色時，將一滴染色液滴在蓋玻片的一側(cè)，用吸水紙從另一側(cè)吸引，使蓋玻片下的標本均勻著色。著色后，用同樣的方法，滴一滴清水，把染色液吸出后，在顯微鏡下觀察。